混池(BSA)定位必看的10个知识点!

设计混池定位实验必须知道的10个知识点!

作为经典的基因定位方法,BulkedSegregant AnalysisBSA,集群分离分析法)具有适用范围广,群体要求低,实验成本低的优势,能够有效对质量性状或数量性状的主效基因进行定位。

但很多初次接触的老师仍对BSA的取样、提取、测序等方面有不少疑问,在此我们总结了10个设计BSA时最常见的问题,希望对大家有所帮助。

Q1取材时对亲本有什么要求?

A1亲本要选用尽量纯的个体,可通过自交进行纯化,两个亲本要在目标性状上有显著差异,但其他性状尽量保持一致,以降低后期定位分析的干扰。

Q2对子代群体有什么要求?

A2理论上来说,只要目标性状不同的亲本杂交后代产生了性状分离都可以拿来做BSA,但是比较常用的群体有:F2、回交群体、重组自交系等。

如果是质量性状,子代的显隐性个体比值可能有1:13:1等情况;数量性状的话,子代性状应当符合正态分布为佳,如果严重偏离,需要考虑是否有隐性致死基因产生了作用。

Q3没有亲本是否可以做BSA

A3可以,但是不建议。目前主流的定位算法有ED法和snp-index法,其中ED法可以在没有亲本的情况下进行,但这样定位效果肯定不如有双亲数据的实验。建议重新杂交构建群体,保存好亲本DNA,以备后用。

Q4子代取多少样品才够呢?

A4子代的取样应当符合以下原则:定位质量性状的,应该取尽可能多的隐性个体,最低不能低于20,一般在30-50之间,然后取对应数量的显性个体;定位数量性状的,一般是选择最极端的各5%-10%性状的个体,还可以将子代的性状数据做个类似如下的直方图:

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然后结合直方图的信息,共同来选择样品,如上图所示,最左侧的两列和最右侧的两列适合取样。

Q5子代群体规模不够,应该优先取极端还是优先取数量?

A5很多物种的子代群体很难做到200个以上,就会出现极端个体不足20的情况,这时我们建议宁可少取些样品,也不要把性状居中的样品选择进去,只会对后期分析产生干扰。当然每一个池只有十来个样品的实验,是否能够得到满意的结果,是存在一定风险的。

Q6提取子代DNA时应当先混后提,还是先提后混?

A6理想状态是将每个子代样品都单独提取DNA,然后根据DNA的浓度,等量均匀混合成一份DNA,这样各个子代的DNA信息量是等量的。但由于目前测序项目成交价较低,一般公司的做法是让客户从每个样品上取等量的组织混合,然后提取作为混池DNA样品。

等组织样混合提取效果不如单样品提取后混合,但是其影响完全是可以接受的。先混合再提取虽然会导致来自每个样品的DNA并不等量,但取样足够理想的话,这些样品在目标位点的基因型应该是一致的,主要影响的是背景噪音的组成,这样并不影响我们后期数据分析时找到目标位点。

Q7做重测序对DNA的质量要求是怎么样的?

A7虽然每个公司的具体要求略有不同,但重测序对DNA的质量要求并不太苛刻。需要您自己做的是跑一下琼脂糖胶,观察主带是否清晰,是否无蛋白污染,另外用分光光度计检测下浓度和总量(建议浓度不低于20ng/ml,总量不低于2微克)。

Q8重测序时对亲本和子代的测序深度要求是多少?

A8为保证SNPInDel标记的准确性,测序应当保证一定的深度,亲本建议不低于20×,混池应当结合取样数量来定,平均每个样品不低于1×,比如子代是30+30,那么每个子代混池的测序深度就不能低于30×,经费允许的话,可以再适当加深。

Q9定位效果不理想可能是什么原因导致的?

A9导致定位不理想的因素很多,主要有以下几点:

① 亲本间遗传背景差异大,除了目标性状外,还有很多其他差异,这样对分析产生的干扰很大,难以定位;

② 性状统计复杂,目标性状可能是由多个简单性状构成,可以拆分性状,重新定位,另外数量性状本身也定位难度较高,有一定不可控性;

③ 测序数据有污染,可以通过抽取部分测序数据在nr库里做blast比对,检查比对结果;

④ 分析方法不适用,可以分别用ED法和snp-index法进行定位,比较定位结果。

Q10定位区间有点大,怎么进一步往下做?

A10为了进一步缩小定位区间,可以在BSA定位区间内找些SSRSNP或者InDel标记,进行局部作图,可以有效的缩小定位区间。

今天的知识点就讲到这里,想学习生物信息学的老师、同学赶紧点击这里进入组学大讲堂网课首页吧!~

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  • 发表于 2019-07-04 12:40
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  • 分类:基因组学

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omics007
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